го медицинского образования

Министерство общего и профессионального образования

Российской Федерации

Ульяновский государственный университет ИМиЭ

Медицинский факультет

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

По патологической физиологии

Часть 1

Общая патофизиология

Методические указания

Для студентов медицинского факультета

(специальность «Лечебное дело»)

Ульяновск, 2001

ББК 52.52

А-18

Печатается по решению Ученого совета

медицинского факультета ИМиЭ

Ульяновского государственного университета

Методические указания по патологической физиологии. Часть 1. Общая патофизиология: Методические указания для студентов медицинского факультета (специальность «Лечебное дело») / Сост.: к.м.н., доцент М.Н.Авакова, д.м.н., проф. В.Г.Малышев. Ульяновск: Ул ГУ, 2001. 36 с.

В настоящем методическом указании представлен курс практических занятий по общей патологической физиологии (раздел: «Типовые патологические процессы»). Каждая тема включает целевую установку, теоретические вопросы, которые могут использоваться студентами при подготовке к занятиям, подробное описание методики постановки эксперимента с указанием вида животного, перечня необходимого оборудования и реактивов.

Выполнение представленных работ позволяет привить студентам навыки планирования и постановки экспериментов, приобрести практические навыки, изучить основные механизмы развития типовых патологических процессов. В практикум включены те эксперименты, которые наиболее полно позволяют выявить ту или иную закономерность, лежащую в основе патологического процесса, что способствует усвоению теоретического курса общей патофизиологии.

Методические указания составлены в соответствии с программой по патофизиологии утвержденной Министерством здравоохранения РФ (1997г.) и предназначены для студентов 3 курса высших медицинских учебных заведений.

Рецензент

Д.м.н., проф., зав.кафедрой госпитальной терпии Ул ГУ

И..Г. Пащенко

@ Ульяновский государственный университет, 2001

С о д е р ж а н и е

Стр.

Занятие 1. Введение. Предмет и задачи патофизиологии.

Общая нозология. 4

Занятие 2. Болезнетворное действие факторов внешней среды. 5

Занятие 3. Повреждение клетки. 7

Занятие 4. Реактивность организма и ее значение в патологии. 10

Занятие 5. Нарушение микроциркуляции. 14

Занятие 6. Расстройство периферического кровообращения. 16

Занятие 7. Патология кислотно – основного состояния. 19

Занятие 8. Патология водно – электролитного обмена.

Отек и водянка 22

Занятие 9. Воспаление. 25

Занятие 10. Воспаление. 27

Занятие 11. Нарушение терморегуляции. 30

Занятие 12. Гипоксия. 32

Занятие 13. Патология обмена веществ.

Нарушение углеводного обмена 36

Занятие 14. Аллергия. 39

Занятие 15. Аллергия. 41

З а н я т и е № 1

Тема. Введение. Предмет и задачи патофизиологии.

Общая нозология.

Цель занятия. Определить место патофизиологии в системе высше-

го медицинского образования.

Теоретические вопросы.

1. Предмет и задачи патологической физиологии, ее место в системе высшего медицинского образования.

2. Патологическая физиология как теоретическая и методологическая база современной клинической медицины.

3. Методы патофизиологии. Моделирование, как основной метод патофизиологии, его виды, возможности и ограничения.

4. Значение эксперимента в развитии патофизиологии и клинической медицины.

5. Общие принципы построения медико-биологических экспериментов и обсуждение их результатов.

6. Морально-этические аспекты экспериментирования на животных.

7. Понятие о клинической патофизиологии, ее задачи и перспективы.

8. Основные этапы развития патофизиологии. Роль отечественных и зарубежных ученых в развитии патофизиологии.

9. Структура учебного курса патофизиологии.

10. Определение понятий «здоровье» и «болезнь». Критерии болезни.

11. Патологический процесс, патологическое состояние. Типовые патологические процессы, понятие, примеры.

12. Болезнь как диалектическое единство повреждений и защитно-приспособительных реакций организма.

Работа № 1. Работа с экспериментальными животными (приобретение практических навыков фиксации, наркотизации, инъекций и т.д.).

Материальное оснащение:

1. Дощечка для фиксации мыши - 2 шт.

2. Завязки для фиксации животных - 8 шт

3. Шприц на 2 мл. - 2 шт.

4. Шприц на 5 мл. - 2 шт.

5. Анатомический пинцет - 2 шт.

6. Препаровальная игла - 2 шт.

7. Корнцанг - 2 шт.

8. Марлевые салфетки

9. Ватные тампоны

10. Гексинал 1 % раствор - 3 мл.

11. Эфир этиловый - 1 фл.

12. Раствор хлористого натрия 0,85 % - 50 мл.

13. Раствор хлористого натрия 0,65 % - 50 мл.

14. Эксикатор - 1 шт.

15. Животные: лягушка, - 2 шт.

мышь, - 2 шт.

крыса. - 2 шт.

Методика проведения опыта:

Методика проведения манипуляций будет излагаться на занятии.

З а н я т и е № 2

Тема. Болезнетворное действие факторов внешней среды.

Цель занятия. Изучить роль причин и условий в возникновении бо-

лезней. Получить экспериментальные доказательства

болезнетворного действия ускорений и перегрузок.

Теоретические вопросы.

1. Общая этиология. Роль причин и условий в возникновении болезней.

2. Понятие о внешних и внутренних причинах и факторах риска болезни.

3. Анализ некоторых представлений общей этиологии (монокаузализм, кондиционализм, конституционализм и др.).

4. Повреждение как начальное звено патогенеза.

5. Проявления повреждения на разных уровнях интеграции организма.

6. Повреждающее действие физических факторов. Действие ультрафиолетовых лучей. Патогенное действие электрического тока.

7. Действие химических факторов на организм.

8. Воздействие механических факторов.

9. Кинетозы. Определение. Этиология, механизм развития, клинические признаки.

10. Болезнетворное влияние биологических факторов.

11. Психогенные патогенные факторы; Ятрогенные болезни.

12. Значение социальных факторов в возникновении болезней человека.

Работа № 1. Изменение вестибулярной функции при калорической пробе.

Материальное оснащение

1. Хлороформ медицинский во флаконе с глазной

пипеткой - 5 мл.

2. Животные: морская свинка - 1 шт.

Методика проведения опыта:

У морской свинки в исходном состоянии определяют позу, характер походки, положение глазных яблок. Затем животное кладут на бок и вливают в наружный слуховой проход несколько капель хлороформа. Животное в этом положении удерживают 3 – 5 минут. Обращают внимание на изменение позы животного и перераспределение тонуса мышц конечностей. Отмечают характер нистагма и признаки динамической атаксии. Определяют положение глаз при насильственной фиксации головы в нормальном состоянии. При этом восстанавливается симметрия в распределении тонуса мышц конечностей и утрачиваются лабиринтные рефлексы.

Работа № 2. Развитие кинетоза у мышей при действии радиального ускорения.

Материальное оснащение:

1. Центрифуга ручная с пеналами для вращения мелких

лабораторных животных - 1 шт.

2. Животные: белая мышь - 2 шт.

Методика проведения опыта:

У мышей до начала эксперимента определяют позу, двигательную активность и характер походки. Затем их помещают в пеналы центрифуги и вращают в течение 20 – 30 секунд. Тотчас после окончания вращения животных вынимают и наблюдают за их поведением. При этом подопытные мыши совершают манежные движения по направлению вращения центрифуги вследствие резкого повышения тонуса мышц конечностей на стороне раздражения вестибулярного аппарата.

Работа № 3. Изменение вестибулярной функции при ротационной пробе (в клинике).

Материальное оснащение

1. Кресло Барани - 1 шт.

2. Аппарат для измерения артериального давления - 1 шт.

Методика проведения опыта

У испытуемого в исходном состоянии подсчитывают пульс, измеряют артериальное давление. Проводят с закрытыми глазами пальце-носовую и динамическую пробу (с закрытыми глазами испытуемый проходит по прямой линии). Затем испытуемого с закрытыми глазами вращают слева направо, делая примерно 10 оборотов за 20 сек; в момент прекращения вращения включают секундомер. Испытуемый открывает глаза и фиксирует взгляд на какую-либо точку. В норме при этом появляется горизонтальный нистгам продолжительностью около 0,5 минут. Измеряют артериальное давление и подсчитывают число сердечных сокращений. В последующем испытуемый вновь закрывает глаза и его вращают справа налево. В результате наблюдается горизонтальный нистгам вправо. Проводят пальценосовую и динамическую пробы.

Полученные результаты заносят в таблицу.. Анализируют механизмы развития основных симптомов кинетоза.

З а н я т и е № 3

Тема. Реактивность и ее значение в патологии.

Цель занятия. Показать значение реактивности в механизме возник

новения, течения и исхода патологических процессов.

Изучить влияние некоторых экзо- и эндогенных

факторов на реактивность организма.

Теоретические вопросы.

1. Определение понятия «реактивность организма».

2. Виды реактивности и их характеристика.

3. Факторы, определяющие реактивность организма.

4. Роль нервной и эндокринной систем в механизме реактивности.

5. Формы реактивности: нормергия, гиперергия, гипергия, дизергия.

6. Основные параметры, определяющие реактивность организма.

7. Формирование реактивности организма в фило- и онтогенезе.

8. Взаимосвязь реактивности и резистентности.

9. Значение реактивности в развитии патологических процессов.

Работа № 1. Реактивность организма в условиях пониженного содержания кислорода во вдыхаемом воздухе.

Материальное оснащение

1. Широкогорлая коническая колба на 100 мл - 1 шт.

с плотно пригнанной резиновой пробкой

2. Парафин расплавленный в ванночке - 50 мл.

3. Животные: белая мышь - 1 шт.

Методика проведения опыта.

После предварительной оценки двигательной активности животного, регистрации частоты и глубины дыхания, мышь помещают в колбу, которую плотно закрывают пробкой. Для большей герметичности края пробки заливают расплавленным парафином. Наблюдают за изменениями локомоторной функции, дыхательными нарушениями (частоту и амплитуду дыхания оценивают каждые 2 мин.), появлением акроцианоза. Обращают внимание на последовательность развития указанных признаков вплоть до гибели животного. Полученные результаты заносят в следующую таблицу.

Таблица.

Примечание: * 1 балл – поверхностное дыхание

2 балла – дыхание средней амплитуды

3 балла – глубокое дыхание.

** 1 балл – двигательная активность снижена (живот

ное заторможено);

2 балла – двигательная активность в норме;

3 балла – двигательная активность повышена (жи-

вотное возбуждено).

Строят график, характеризующий изменение частоты дыхания в динамике гипоксической гипоксии. Определяют сроки появления стадий компенсации и декомпенсации при изучаемой патологии.

Работа № 2. Изменение реактивности организма в условиях высокой температуры окружающей среды.

Материальное оснащение.

1. Широкогорлая коническая колба на 100 мл

с плотно пригнанной резиновой пробкой - 1 шт.

2. Парафин расплавленный, в ванночке - 50 мл.

3. Эксикатор - 1 шт.

4. Вода теплая (45 – 50⁰ С)

5. Термометр химический - 1 шт.

6. Животные: белая мышь - 1 шт.

Методика проведения опыта.

У животного в исходном состоянии оценивают двигательную активность, определяют частоту и глубину дыхания. Затем мышь помещают в колбу, которую герметически закрывают пробкой. Колбу ставят в эксикатор с теплой водой. Дальнейший ход эксперимента аналогичен вышеописанному. Полученные результаты заносят в таблицу (см. выше) и сопоставляют с опытом № 1.

Работа № 3. Изменение реактивности организма путем воздействия на центральную нервную систему.

Материальное оснащение:

1. Широкогорлая коническая колба на 100 мл

с плотно пригнанной резиновой пробкой - 1 шт.

2. Парафин расплавленный, в ванночке - 50 мл.

3. Эксикатор с холодной водой - 1 шт.

4. Тазик со льдом - 1 шт.

5. Термометр химический - 1 шт.

6. Шприц на 1 мл - 1 шт.

7. 1 % раствор гексенала - 5 мл.

8. Животные: белая мышь - 1 шт.

Методика проведения опыта.

Мышь наркотизируют подкожным введением 1 % раствора гексенала из расчета 0,1 мл на 10 г массы животного. После оценки двигательной активности, определения частоты и глубины дыхания в исходном состоянии мышь помещают в колбу, которую герметически закрывают пробкой. Колбу ставят в эксикатор с холодной водой (t = 0 – 2⁰ С). Последующий ход опыта аналогичен предыдущим. Результаты исследования заносят в таблицу (см. выше) и сопостовляют с опытом № 1.

Эксперимент показывает закономерность изменения реактивности организма в условиях снижения кислород-зависимого энергетического метаболизма структур ЦНС.

Работа № 4. Изменение реактивности организма в условиях чрезмерной физической нагрузки.

Материальное оснащение

1. Широкогорлая коническая колба на 100 мл

с плотно пригнанной резиновой пробкой - 1 шт.

2. Парафин расплавленный, в ванночке - 50 мл.

3. Эксикатор с теплой (38⁰ С) водой - 1 шт.

4. Термометр химический - 1 шт.

5. Животные: белая мышь - 1 шт.

Методика проведения опыта.

Мышь предварительно заставляют плавать около 5 мин в эксикаторе с теплой водой. После этого оценивают двигательную активность, измеряют частоту и глубину дыхания (исходные показатели). Затем животное помещают в колбу, которую герметически закрывают пробкой. Последующий ход опыта аналогичен предыдущим. Результаты исследования заносят в таблицу (см. выше) и сопоставляют с опытом № 1.

Опыт демонстрирует характер изменения компенсаторно-приспособительных процессов в условиях чрезмерного физического напряжения.

Работа № 5. Чувствительность различных видов животных к гипоксии вызванной действием угарного газа.

Материальное оснащение

1. Установка для получения угарного газа - 1 шт.

2. Пинцет анатомический - 1 шт.

3. Спиртовка - 1 шт.

4. Серная кислота (концентрированная) - 20 мл.

5. Муравьиная кислота - 20 мл.

6. Животные: белая мышь, - 1 шт.

лягушка - 1 шт.

Методика проведения опыта.

Лягушку и белую мышь помещают в герметически закрытую колбу, в которую порциями вводится угарный газ. Угарный газ (СО) получают, прибавляя муравьиную кислоту к нагретой серной кислоте. Последняя отнимает воду от муравьиной кислоты, выделяя оксид углерода:

НСООН ® СО + Н₂О

Наблюдают за поведением животных Эксперимент демонстрирует видовую реактивность животных на действие гипоксии.

При анализе результатов, полученных в опытах №№ 2 – 5 обращают внимание на закономерности изменений сроков проявления компенсаторных реакций при гипоксической гипоксии на фоне действия изученных экстремальных факторов.

Делают заключение и выводы по проделанной работе.

З а н я т и е № 4

Тема. Повреждение клетки.

Цель занятия. Изучить причины, общие механизмы развития пов-

реждения клеток; механизмы защиты и адаптации

клеток при повреждающих воздействиях.

Теоретические вопросы

1. Экзо- и эндогенные причины повреждения клеток.

2. Механизмы повреждения клеток (повреждение мембран и ферментов клетки)

3. Нарушение механизмов энергообеспечения клеток.

4. Значение дисбаланса ионов натрия, калия, кальция и жидкости в механизмах повреждения клетки.

5. Нарушение генетического аппарата.

6. Апоптоз, его значение в норме и патологии.

7. Специфические и неспецифические проявления повреждения клетки

8. Системы, обеспечивающие защиту и адаптацию клеток при повреждении.

Работа № 1. Изучение изменения специфической двигательной функции ресничек мерцательного эпителия при альтерации слизистой полости рта лягушки.

Материальное оснащение.

1. Дощечка для фиксации - 2 шт.

2. Препаровальная игла - 2 шт.

3. Ножницы - 2 шт.

4. Раствор соляной кислоты 1 % - 10 мл.

5. Глазная пипетка - 2 шт.

6. Шелковая нить - 20 см.

7. Тампоны ватные

8. Салфетки марлевые

9. Животные: лягушка - 2 шт.

Методика проведения опыта.

Лягушку обездвижить разрушением спинного мозга, отрезать нижнюю челюсть и фиксировать животное на препаровальном столике брюшком вверх. На слизистую неба поместить несколько волокон шелковой нити длиной примерно 1 мм и в течение 3 – 5 мин наблюдать за их перемещением к пищеводу. Затем слизистую неба обработать в течение нескольких минут 1 % раствором соляной кислоты и вновь поместить волокна шелковой нити. Убедиться в том, что после альтерации слизистой перемещение волокон прекращается в результате угнетения ресничек.

Работа № 2. Изучение реакции тучных клеток на повреждение.

Материальное оснащение.

1. Шприц на 5 мл - 1 шт.

2. Ножницы глазные - 1 шт.

3. Пинцет анатомический - 2 шт.

4. Корнцанг - 2 шт.

5. Пипетка Пастеровская - 2 шт.

6. Стекло предметное - 8 шт.

7. Подставка для высушивания мазков - 2 шт.

8. Микроскоп - 10 шт.

9. Тампоны ватные

10. Салфетки марлевые

11. Раствор для смыва тучных клеток с серозных

оболочек: раствор хлористого натрия 0,7 % и - 100 мл.

1,5 % раствор лимоннокислого натрия - 20 мл.

12. Раствор для фиксации мазков:

смесь спирта этилового 96 % и эфира

в пропорции 1: 1 - 50 мл.

13. Краска Романовского-Гимза - 50 мл.

14. Иммерсионное масло - 1 фл.

15. Раствор соляной кислоты 1 % - 30 мл.

16. Раствор хлористого натрия 0,85 % - 50 мл.

17. Животные: крыса - 1 шт.

Методика проведения опыта

Крысе ввести внутримышечно кортизон в дозе 5 мг/100 г веса с целью увеличения числа тучных клеток в перитонеальной жидкости. Через сутки крысе в борюшную полость ввести подогретую до 37⁰ С смесь 0,7 % раствора поваренной соли и 1,5 % раствора лимоннокислого натрия для смыва тучных клеток с серозных оболочек. Спустя 3 мин животное наркотизировать эфиром, вскрыть брюшную полость, пастеровской пипеткой набрать жидкость и перенести ее по капле на два предметных стекла. К капле перитонеальной жидкости добавить 1 каплю 1 % раствора соляной кислоты (опыт), а к другой – каплю физиологического раствора (контроль). Через 30 сек из капель сделать мазки, высушить, фиксировать в смеси спирта и эфира (1: 1) в течение 15 мин и окрасить краской Романовского-Гимза. После окраски мазки промыть водопроводной водой, обсушить и рассматривать под иммерсионной системой.

Сосчитать 100 тучных клеток и вычислить процент дегрануляции. Определить и объяснить различие между опытом и контролем.

З а н я т и е № 5

Тема. Нарушение микроциркуляции.

Цель занятия. Изучить причины и механизмы нарушения кровотока в сосудах микроциркуляторного русла.

Теоретические вопросы:

1. Механизмы нейро-гуморальной регуляции микрогемоциркуляции.

2. Методы изучения микрокровотока и реологических свойств крови.

3. Причины и механизмы нарушений микрогемоциркуляции.

4. Сладж, его виды; причины возникновения, последствия.

5. Последствия нарушений реологических свойств крови.

6. Причины и механизмы нарушений микрогемоциркуляции, связанных с изменениями функции сосудов.

7. Механизмы нарушений транскапиллярного обмена.

8. Причины и механизмы развития внесосудистых нарушений микрогемоциркуляции.

9. Особенности нарушений микролимфоциркуляции.

Работа № 1. Изменения микроциркуляции в сосудах брыжейки тонкого кишечника лягушки при перевязке приносящей артерии.

Материальное оснащение

1. Фиксирующая дощечка с боковым отверстием - 1 шт.

2. Булавки - 10 шт.

3. Препаровальная игла - 1 шт.

4. Пинцет глазной - 2 шт.

5. Ножницы глазные - 1 шт.

6. Хирургическая круглая игла - 1 шт.

7. Иглодержатель - 1 шт.

8. Лигатура - 10 шт.

9. Ватные тампоны

10. Микроскоп - 1 шт.

11. Раствор хлорида натрия 0,65 %

(во флаконе с пипеткой) - 30 мл.

12. Животные: лягушка - 1 шт.

Методика проведения опыта.

Лягушку обездвиживают разрушением спинного мозга. Для этого завернутую в марлевую салфетку животное берут в левую руку. Указательным пальцем той же руки голову слегка пригибают кпереди. В результате на черепной покрышке появляется небольшое углубление, куда вращательным движением вставляют препаровальную иглу и продвигают в спинномозговой канал лягушки. Эффективность разрушения спинного мозга оценивают по наличию паралича конечностей.

Обездвиженную лягушку помещают на фиксирующую дощечку спиной вверх так, чтобы правый край живота прилегал к круглому отверстию. Боковым продольным разрезом вскрывают брюшную полость, извлекают петли тонкого кишечника (пинцетом не брать!) осторожно растягивают брыжейку над отверстием и закрепляют ее булавками.

Препарат брыжейки рассматривают под малым увеличением микроскопа (окуляр – 15^х , объектив -8 ^х ). Для изучения выбирают артериолы, капилляры и венулы. Сосуды в поле зрения не должны быть толстостенными; в них необходимо четко различать два слоя: центральный, в котором движутся форменные элементы и периферический (плазменный), свободный от клеток крови.

Затем с помощью хирургической иглы прокалывают брыжейку, берут на лигатуру крупную приносящую артерию и перевязывают. Для предотвращения подсыхания, брыжейку обильно орошают физиологическим раствором (примерно 1 раз в 2 мин).

Работа № 2. Влияние острой кровопотери на микроциркуляцию в сосудах брыжейки тонкого кишечника лягушки.

Материальное оснащение

1. См. в работе № 1

Методика проведения опыта.

У спинальной лягушки указанным выше способом готовят препарат брыжейки тонкого кишечника. Под малым увеличением микроскопа (окуляр – 15^х , объектив -8 ^х ) изучают картину нормального кровотока во всех микрососудах, попавших в поле зрения. После этого ножницами перерезают артерию бедра лягушки.

Во всех опытах оценивают изменения просвета сосудов микрогемоциркуляторного русла, особое внимание обращают на изменение характера кровотока в функциональных капиллярах. При этом регистрируют отдельные стадии нарушения микрогемоциркуляции: замедление кровотока, маятникообразное движение эритроцитов и стаз. Выясняют наличие краевого стояния форменных элементов крови, признаков диапедеза, агрегации эритроцитов и микротромбообразования. Полученные данные зарисовывают в тетрадях.

В заключении обсуждают возможные механизмы развития обнаруженных фаз нарушений микрогемоциркуляции. По результатам исследования делают соответствующие выводы.

З а н я н и е № 6

Тема. Нарушения периферического кровообращения.

Цель занятия. Изучить причины, патогенез, исходы и значение для

организма нарушений периферического кровообра-

щения.

Теоретические вопросы:

1. Основные формы нарушения периферического кровообращения.

2. Артериальная гиперемия, виды, причины и механизм развития.

3. Венозная гиперемия. Причины, механизм развития.

4. Симптомы изменения микроциркуляции при артериальной и венозной гиперемии.

5. Значение артериальной и венозной гиперемии для организма.

6. Ишемия. Причины и механизм развития, нарушения микроциркуляции.

7. Симптомы и последствия ишемий.

8. Факторы определяющие толерантность тканей и органов к ишемии.

9. Эмболия. Пути распространения эмболов. Классификация эмболий, последствия.

Работа № 1. Артериальная гиперемия уха морской свинки

Материальное оснащение:

1. Пробирка с теплой водой (45 – 50 ⁰ С) - 1 шт.

2. Ватные тампоны

3. Этиловый эфир - 50 мл.

4. Животные: морская свинка - 3 шт.

Методика проведения опыта:

Эксперимент ставят на трех морских свинках. Ухо одной из них слегка протирают ватой, смоченной эфиром, к уху другой прикладывают пробирку с теплой водой. Затем уши подопытных животных визуально сравнивают с ушами третьей (контрольной) свинки.

В протоколе опыта описывают характер сосудистого рисунка (изменение диаметра и конфигурации артериол и венул, а также плотность капиллярной сети).

Работа № 2. Демонстрация феномена «ноу- рефлоу».

Материальное оснащение

1. Шприц на 2 мл. - 2 шт.

2. Пинцет глазной - 2 шт.

3. Ножницы глазные - 1 шт.

4. Лупа исследовательская (8^х) - 2 шт.

5. 1 % раствор гексенала - 5 мл.

6. Очищенная черная тушь (частицы черной туши

осаждают путем центрифугирования

при 300 об/мин в течение 15 мин.) - 5 мл.

7. Животные: белая крыса - 2 шт.

Методика проведения опыта:

Эксперимент проводят на двух крысах, которых наркотизируют внутрибрюшинным введением 1 % раствора гексенала из расчета 30 мл на 1 кг массы животного.

Одной из них (контрольная крыса) после вскрытия грудной клетки в левый желудочек с помощью тонкой иглы вводят 1,5 – 2 мл черной туши. Полноту заполнения сосудов индикатором контролируют по почернению языка и конъюктивы глаза. После остановки кровотока и гибели животного вскрывают брюшную полость, извлекают почку, печень и селезенку. Поверхность органов рассматривают под лупой. В протоколе опытов отмечают равномерность распределения туши в соответствующих сосудах.

У другой (опытной) крысы осуществляют дозированное кровопускание путем перерезки с последующим пережатием поврежденного участка бедренной артерии в проксимальном отделе. Техника постановки опыта аналогична предыдущей, форму и размеры очагов авскуляции (белые пятна на черном фоне сосудистого рисунка) – феномен «ноу- рефлоу».

В заключении при обсуждении результатов каждого опыта выясняют возможные механизмы нарушения локального кровообращения в тканях. Делают краткие выводы.

Работа № 3. Жировая эмболия микрогемоциркуляторного русла брыжейки тонкого кишечника лягушки.

Материальное оснащение

1.Фиксирующая дощечка с боковым отверстием - 1 шт.

2. Булавки - 10 шт.

3. Препаровальная игла - 1 шт.

4. Пинцет анатомический - 1 шт.

5. Пинцет глазной - 2 шт.

6. Ножницы глазные - 1 шт.

7. Шприц на 1 мл - 1 шт.

8. Ватные тампоны

9. Микроскоп - 1 шт.

10. Раствор хлорида натрия 0,65 %

(во флаконе с пипеткой) - 30 мл.

11. Вазелиновое масло - 2 мг.

12. Животные: лягушка - 1 шт.

Методика проведения опыта.

После разрушения спинного мозга обездвиженную лягушку помещают на фиксирующую дощечку брюшком вверх. Иссечением грудины и мягких тканей обнажают сердце и в полость желудочка вводят 0,2 мл слегка подогретого вазелинового масла.

Затем лягушку переворачивают на дощечке спинкой вверх и готовят препарат брыжейки тонкого кишечника (см. работу № 1 занятия 4).

Под малым увеличением микроскопа (окуляр – 15^х , объектив -8 ^х ) наблюдают за появлением в просвете сосудов брыжейки эмбол, которые продвигаются по току крови и закупоривают сосуды. Детально характеризуют выявленные стадии нарушения микрогемоциркуляции в зоне эмболии и в перифокальных участках брыжейки.

Работа № 4. Закономерности изменений кровоснабжения тканей при эмболии.

Материальное оснащение.

1. Препаровальный парафиновый столик - 1 шт.

2. Булавки - 3 шт.

3. Шприц на 2 мл. - 2 шт.

4. Пинцет глазной - 2 шт.

5. Ножницы глазные - 1 шт.

6. Лупа исследовательская (8^х) - 2 шт.

7. 1 % раствор гексенала - 5 мл.

8. Очищенная черная тушь (частицы черной туши

осаждают путем центрифугирования

при 300 об/мин в течение 15 мин.) - 5 мл.

9. Вазелиновое масло - 2 мг.

10. Животные: белая крыса - 2 шт.

Методика проведения опыта.

Эксперимент проводят на двух наркотизированных гексеналом (30 мг/кг, внутрибрюшинно) крысах. Опытной крысе после вскрытия грудной клетки внутрисердечно (в левый желудочек) вводят 0,5 мл подогретого вазелинового масла. После этого сразу же вводят (с помощью той же иглы) очищенную черную тушь в количестве 1,5 – 2,0 мл. Полноту заполнения сосудов индикатором контролируют по почернению языка и конъюктивы глаза. После гибели животного вскрывают брюшную полость; в почках печени и селезенки с помощью исследовательской лупы выявляют очаги авскуляции. В протоколе опыта подробно описывают локализацию зон «ноу- рефлоу», их форму и величину.

Для контроля распределения туши в сосудах указанных органов оценивают у интактной крысы. Ход эксперимента (без введения вазелинового масла) аналогичен описанному выше.

В заключении обсуждаются возможные механизмы местного нарушения кровотока при эмболии. Делаются выводы по проделанной работе.

З а н я т и е № 7

Тема. Нарушения кислотно-основного состояния.

Цель занятия. Изучить причины развития, механизмы компенсации

и значение для организма нарушений КОС.

Теоретические вопросы.

1. Понятие кислотно-основного состояния (КОС) организма.

2. Значение КОС для жизнедеятельности организма.

3. Основные показатели КОС.

4. Механизмы регуляции КОС. Роль буферных систем, почек, легких, желудочно-кишечного тракта, печени в регуляции КОС.

5. Классификация нарушений КОС.

6. Понятие о компенсированных и декомпенсированных ацидозах и алкалозах.

7. Причины, механизмы развития и компенсации различных видов ацидоза и алкалоза.

8. Изменения показателей КОС, принципы коррекции различных видов ацидоза и алкалоза.

9. Нарушения в органах и системах при ацидозах и алкалозах.

Работа № 1. Нарушение кислотно-основного состояния при алоксановом диабете у крыс.

Материальное оснащение.

1. Градуированные пипетки на 2 мл, на 5 мл, на 10 мл - по 4 шт.

2. Колба (стакан) на 50 мл - 4 шт.

3. Цилиндр мерный на 50 мл - 2 шт.

4. Сыворотка контрольного и опытного животных - по 10 мл.

5. Вода дистиллированная - 10 мл.

6. Спиртовый раствор диметиламиноазобензола 0,5 % - 5 мл.

7. Раствор соляной кислоты 0,1 N - 50 мл.

8. Раствор едкого натра 0,1 N - 50 мл.

9. Моча контрольного и опытного животных - по 20 мл.

10. М/15 фосфатный буфер рН = 7,4

(80,8 мл р-ра двухзамещенного фосфата) - 50 мл.

11. Индикатор фенолрот (100 мг фенолрота растворяют

в 14,2 мл 0,02 N р-ра едкого натра и доводят

дистиллированной водой до 250 мл) - 10 мл.

12. Животные: крыса с аллоксановым диабетом, - 1 шт.

крыса интактная - 1 шт.

Методика проведения опыта.

За 7 дней до эксперимента подопытной крысе вводят аллоксан из расчета 20 мг на 100 г массы животного (5 % раствор аллоксана в физиологическом растворе).

На занятии у подопытной и контрольной (интактной) крыс определяют буферную емкость плазмы крови и титрационную кислотность мочи.

Полученные показатели кислотно-щелочного равновесия сопоставляют, анализируют и делают соответствующие выводы.

А. Определение буферной емкости сыворотки крови при аллоксановом диабете

В одну колбочку набирают 5 мл дистиллированной воды, в другую 5 мл исследуемой сыворотки, разведенной в 5 раз. В обе колбочки добавляют по 2 капли индикатора – метилоранжа и титруют 0,1 N раствором соляной кислоты из бюретки до появления слабо-розового окрашивания. В две другие колбочки набирают такое же количество разведенной сыворотки и дистиллированной воды, прибавляют к ним по 2 капли индикатора-фенолфталеина, титруют 0,1 N раствором NaOH из бюретки до появления слабо-розового окрашивания. Полученные результаты занести в таблицу.

Таблица.

По данным отношения H₂ CO₃ / NaHCO ₃ вычислить щелочные резервы крови и оценить состояние кислотно-щелочного равновесия крови.

Б. Определение титрационной кислотности мочи

Мочу крысы собирают в отстойник за 24 часа. Измеряют диурез, затем 10 мл мочи переносят в мерный цилиндр (опытная проба). Исследуемую мочу разбавляют дистиллированной водой до исчезновения собственной окраски мочи. Отмечают объем воды, пошедшей на разбавление мочи. В другой мерный цилиндр наливают 10 мл фосфатного буфера рН = 7,4 (контрольная проба). Затем прибавляют такое же количество, как в опытной пробе, дистиллированной воды. В оба цилиндра добавляют по 2 мл индикатора фенолрота. Мочу титруют 0,1 N раствором едкого натра до тех пор, пока цвет жидкостей не выравнится.

В итоге, измеряют объем щелочи, пошедшей на титрование взятого для анализа образца мочи; полученную величину умножают на 10. Титрационную кислотность мочи при этом выражают в миллиэквивалентах на литр (мэкв/л). В окончательном виде данную величину умножают на суточное количество мочи, выраженное в литрах.

В норме титрационная кислотность мочи составляет 20–40 мэкв/сутки, что соответствует 200 – 400 мл 0,1 N р-ра NaOH, пошедшего на титрование суточного количества мочи до рН = 7,4.

З а н я т и е № 8

Тема. Нарушение водно-электролитного обмена. Отек и водянка.

Цель занятия. Изучить типовые нарушения водно-электролитного

обмена; причины и механизмы развития отека.

Теоретические вопросы.

1. Нейро-гуморальная регуляция водно-электролитного обмена.

2. Принципы классификации и основные виды нарушения водно-электролитного обмена.

3. Гипогидратация, виды, причины развития, патогенетические особенности.

4. Симптомы, влияние на организм и принципы коррекции гипогидратации.

5. Гипергидратация. Виды.

6. Причины, механизм развития, симптомы и последствия гипергидратации.

7. Механизм обмена воды между кровью и тканями (закон Старлинга).

8. Отек, водянка. Определение, патогенетические факторы развития отеков.

9. Классификация отеков по этиологии.

10. Патогенез сердечных, почечных, воспалительных, аллергических, голодных, токсических и др. отеков.

11. Местные и общие нарушения, возникающие в организме при отеках.

Работа № 1. Определение гидрофильности ткани по Мак-Клюру и Ольдричу.

Материальное оснащение

1. Ножницы для стрижки волос - 1 шт.

2. Шприц на 1 мл - 1 шт.

3. Раствор хлорида натрия 0,85 % - 5 мл.

4. Животные: морская свинка - 1 шт.

Методика проведения опыта.

У морской свинки за 2 часа до начала эксперимента перевязывают одну из передних конечностей, что приводит к развитию локального отека. Для сравнения берут другую переднюю лапу (контрольную). На ограниченном участке обеих лап симметрично тщательно выстригают шерсть, а затем вводят внутрикожно по 0,2 мл физиологического раствора. Отмечают время появления волдыря («волдырное время») и длительность его рассасывания на опытной и контрольной конечностях.

В заключении проводят анализ полученных результатов и дают им объяснение.

Работа № 2. Качественный анализ белка в выпотных жидкостях (проба Ривальта).

Материальное оснащение.

1. Цилиндр мерный на 100 мл - 1 шт.

2. Пипетка глазная - 3 шт.

3. Уксусная кислота ледяная - 5 мл.

4. Вода дистиллированная - 200 мл.

5. Транссудат (получен из брюшной полости у

больного с асцитом) - 5 мл.

6. Экссудат (взят из плевральной полости при

плеврите) - 5 мл.

Ход анализа:

В цилиндр наливают 100 мл дистиллированной воды, подкисленной 3 – 5 каплями концентрированной уксусной кислоты. При добавлении в раствор 1 – 2 капли экссудата образуется белое облачко, которое опускается до дна цилиндра («дым от папиросы»). Транссудат дает отрицательную пробу Ривальта или образует значительно более слабую полоску, которая спустя 2 – 3 мин исчезает.

Таким образом, пробу используют для отличия транссудата от экссудата. Экссудат обычно содержит серомуцин, дающий положительную пробу Ривальта.

Работа № 3. Количественное определение белка в выпотных жидкостях (унифицированный метод).

Материальное оснащение

1. Пробирки лабораторные - 10 шт.

2. Штативы для пробирок на 5 гнезд - 2 шт.

3. Пипетки на 0,1 мл, на 2 мл, на 5 мл, на 10 мл - по 1 шт.

4. Стакан химический на 50 мл - 2 шт.

5. Стеклограф - 1 шт.

6. Фотоэлектроколориметр - 1 шт.

7. Раствор сульфасалициловой кислоты 3 % - 10 мл.

8. Раствор хлорида натрия 0,85 % - 100 мл.

9. Стандартный раствор альбумина 1 %

(в мерную колбу емкостью 100 мл помещают 1 г

лиофилизированного альбумина, растворяют в

небольшом количестве 0,85 % р-ра хлорида натрия

и этим же раствором доводят до метки) - 10 мл.

10. Транссудат - 5 мл.

11. Экссудат - 5 мл.

Ход анализа:

В стаканчик с (.(мл 0,85 % р-ра хлорида натрия прибавляют 0,1 мл экссудата (разведение 1: 100). В опытную пробирку помещают 1,25 мл разведенного экссудата и 3,75 мл 3% раствора сульфасаллициловой кислоты. Содержимое пробирки перемешивают. В контрольную пробирку наливают 1,25 мл разведенного экссудата и 3,75 мл 0,85 % р-ра хлорида натрия. Через 5 мин опытную пробу измеряют против контроля на фотоэлектроколориметре при красном светофильтре (длина волны – 650 нм) в кювете с длиной оптического пути равным 0,5 см. Расчет концентрации белка в пробе производят по калибровочному графику, учитывая разведение взятой выпотной жидкости. Для построения калибровочного графика из стандартного альбумина готовят следующие разведения (табл.) и обрабатывают их как опытную пробу.

Аналогичным способом осуществляют анализ транссудата. В заключении полученные результаты обобщают. Исходя из содержания белка в пробе, определяют тип выпотной жидкости.

Таблица

Примечание. Прямолинейная зависимость калибровочной кривой сохраняется до концентрации белка в пробе равным 1000 мг/л.

З а н я т и е № 9

Тема. Воспаление.

Цель занятия. Изучить нарушения микроциркуляции, реологиче-

ских свойств крови и эмиграцию лейкоцитов в очаге

воспаления

Теоретические вопросы.

1. Определение понятия «воспаления».Основные компоненты патогенеза воспалительного процесса.

2. Флогогенные факторы, их классификация.

3. Альтерация, ее виды и механизмы развития.

4. Медиаторы воспаления, их виды, происхождение и значение в динамике развития и завершения воспаления.

5. Последовательность нарушений микрогемоциркуляции в воспаленной ткани.

6. Механизмы внутрисосудистых расстройств в очаге воспаления (изменения реологических свойств крови, белкового состава и др.)

7. Методы изучения сосудистых реакций в воспаленной ткани.

Работа № 1. Сосудистые реакции в воспаленной брыжейке тонкого кишечника лягушки (опыт Конгейма).

Материальное оснащение.

1. Фиксирующая дощечка с боковым отверстием - 1 шт.

2. Булавки - 10 шт.

3. Препаровальная игла - 1 шт.

4. Пинцет глазной - 2 шт.

5. Ножницы глазные - 1 шт.

6. Тампоны ватные в стакане

7. Микроскоп - 1 шт.

8. Животные: лягушка - 1 шт.

Методика проведения опыта.

Спинальную лягушку фиксируют на дощечке с отверстием, вскрывают брюшную полость, осторожно извлекают тонкий кишечник. Затем брыжейку растягивают над отверстием с помощью булавок (способ приготовления препарата брыжейки тонкого кишечника лягушки подробнее см. в работе № 1 занятия).

Под малым увеличением микроскопа (окуляр – 15^х , объектив -8 ^х ) определяют стадии локальных сосудистых реакций при воспалении:

а) кратковременное сужение сосудов с последующим их расширением и ускорением кровотока;

б) дальнейшее расширение сосудов и замедление кровотока;

в) маятникообразное движение крови в сосудах и стаз.

Под большим увеличением микроскопа (окуляр – 15^х , объектив - 40 ^х ) изучают краевое стояние и эмиграцию лейкоцитов. Необходимо отметить, что наблюдаемые сосудистые сдвиги вызваны острой воспалительной реакцией брыжейки при ее подсыхании. При этом к флогогенным факторам относятся также воздействия механических, химических и бактериальных агентов после вскрытия брюшины. Поэтому к началу изучения препарата брыжейки ранняя стадия сосудистых сдвигов, как правило, уже развивается и она остается вне поля зрения экспериментатора.

Работа № 2. Характер изменений микрогемоциркуляции брыжейки тонкого кишечника лягушки в очаге альтерации.

Материальное оснащение.

См. работу № 1 данного занятия.

Методика проведения опыта.

У спинальной лягушки готовят препарат брыжейки тонкого кишечника (см. работу № 1 занятия № 4). Под малым увеличением микроскопа выбирают для наблюдения небольшой разветвленный сосуд. На поверхность данного сосуда помещают небольшой кристаллик хлорида натрия, что ведет к повреждению (механическому и химическому) сосудистой стенки, освобождению тромбокиназы и последующему пристеночному тромбообразованию. Процесс образования тромба в участке повреждения сосудистой стенки обычно регистрируется через 2 – 4 мин. после аппликации кристаллика хлорида натрия.

После каждого опыта составляют протокол. В тетрадях зарисовывают краевое стояние лейкоцитов и пристеночный тромб в зоне воспаления. В заключении обсуждают вероятные механизмы развития обнаруженных фаз локальных сосудистых реакций в воспаленной ткани.

З а н я т и е № 10

Тема. Воспаление

Цель занятия. Изучить явления экссудации и фагоцитоза в очаге

воспаления.Дать характеристику различных видов

экссудатов. Определить биологическое значение вос-

паления.

Теоретические вопросы.

1. Механизм экссудации в очаге воспаления.

2. Нарушение сосудистой проницаемости при воспалении, причины, механизм развития

3. Воспалительный отек, механизм развития.

4. Эмиграция лейкоцитов в зоне воспаления, стадии, патогенез.

5. Фагоцитоз, его виды; стадии и механизмы развития.

6. Роль фагоцитоза в неспецифической реактивности организма.

7. Причины и последствия нарушений фагоцитоза.

8. Экссудаты, виды; характеристика.

9. Пролиферация в очаге воспаления.

10. Патогенетические особенности острого и хронического воспаления.

11. Роль реактивности организма в развитии воспаления.

12. Исходы воспаления.

13. Биологическое значение воспалительной реакции.

14. Принципы противовоспалительной терапии.

Работа № 1. Определение протеолитической активности гнойного экссудата.

Материальное оснащение.

1. Пробирки лабораторные - 2 шт.

2. Штатив для пробирок на 5 гнезд - 1 шт.

3. Пипетка на 1 мл. - 1 шт.

4. Стеклограф - 1 шт.

5. Термостат установленный на 38⁰С

6. Раствор казеина 0,25 % (2,5 г казеина растворяют

в 100 мл 0,1 N р-ра едкого натра при подогревании,

затем нейтрализуют 0,1 N р-ром соляной кислоты и

доводят дистиллированной водой до 1 л) - 5 мл.

7. Гнойный экссудат, полученный из абсцесса

(5 мл гноя центрифугируют при 3000 об/мин в

течение 15 мин. Для анализа берут прозрачную

надосадочную жидкость) - 3 мл.

8. Раствор уксусной кислоты 4 % - 5 мл.

9. Раствор хлорида натрия 0,85 % - 5 мл.

Способ определения

В две пробирки наливают по 1 мл 0,25 % раствора казеина. В опытную пробирку прибавляют 10 капель гнойного экссудата, в контрольную – равное количество физиологического раствора. Пробирки встряхивают и ставят в термостат на 30 мин. Затем в обе пробирки добавляют по 2 капли 4 % раствора уксусной кислоты. По степени просветления раствора в опытной пробирке судят о протеолитической активности исследуемого экссудата. Прозрачный раствор в пробе свидетельствует о полном расщеплении казеина до аминокислот. В контрольной пробирке наблюдается существенное помутнение раствора от осажденного уксусной кислотой нерасщепленного казеина.

Работа № 2. Определение аминолитической активности гнойного экссудата.

Материальное оснащение.

1. Пробирки лабораторные - 2 шт.

2. Штатив для пробирок на 5 гнезд - 1 шт.

3. Пипетка на 1 мл. - 1 шт.

4. Стеклограф - 1 шт.

5. Термостат установленный на 38⁰С

6. Раствор крахмала 0,25 (в стакан к 1 г крахмала

прибавляют при помешивании 400 мл кипящего

раствора хлорида натрия 0,85 %) - 5 мл.

7. Раствор Люголя (к 0,5 г кристаллическог йода

прибавляют 2 г йодистого калия и растворяют

в 200 мл дистиллированной воды) - 5 мл.

8. Прозрачный центрифугат гноя (способ приготов-

ления см в работе № 1) - 3 мл.

9. Раствор хлорида натрия 0,85 % - 5 мл.

Способ определения.

В две пробирки наливают по 1 мл 0, 25 % раствора крахмала. В опытную пробирку прибавляют 10 капель гнойного экссудата, в контрольную – равный объем физиологического раствора. Пробирки встряхивают и ставят в термостат на 30 мин. Затем в обе пробирки добавляют по 2 капли раствора Люголя. Характер окраски раствора в опытной пробе свидетельствует об амилолитической активности исследуемого гнойного экссудата. Так, при неполном гидролизе крахмала амилазой образуется более или менее сложные полисахариды – декстрины (амилодекстрины, эритродекстрины, мальтодекстрины и т.д), которые с раствором Люголя дают характерную окраску: фиолетовую, крсно-бурую, красную, светло-желтую При полном ферментативном гидролизе крахмала исследуемый раствор будет бесцветным, при отсутствии гидролиза (контрольная проба) – синим.

Работа № 3. Определение липолитической активности гнойного экссудата.

Материальное оснащение.

1. Пробирки лабораторные - 2 шт.

2. Штатив для пробирок на 5 гнезд - 1 шт.

3. Пипетка на 1 мл. - 1 шт.

4. Стеклограф - 1 шт.

5. Термостат установленный на 38⁰С

6. Взвесь жира (молоко прокипяченное и охлажденное

до 30 – 35⁰ С) - 5 мл.

7. Прозрачный центрифугат гноя

(способ приготовления см. в работе № 1) - 1 мл.

8. Спиртовый раствор фенолфталеина 1 % - 2 мл.

9. Раствор едкого натра 0,01 N - 10 мл.

10. Раствор хлорида натрия 0,85 % - 5 мл.

Способ определения.

В две пробирки наливают по 12 капель жировой взвеси. В опытную пробирку прибавляют 10 капель гнойного экссудата, в контрольную – такое же количество физиологического раствора. Пробирки встряхивают и ставят в термостат на 30 мин. Затем в обе пробирки добавляют по 2 капли фенолфталеина и раствор титруют щелочью (при непрерывном и тщательном помешивании) до бледно-розового окрашивания.

О липолитической активности гнойного экссудата судят по количеству 0,01 N раствора едкого натра, пошедшего на титрование жирных кислот, которые образовались при гидролизе взятого в опыт субстрата (жира). В контрольной пробирке объем, пошедший на титрование щелочи, свидетельствует о содержании жирных кислот в самом субстрате.

В общем заключении по результатам проведенных анализов дают биохимическую характеристику изучаемого гнойного экссудата.

Работа № 4. Морфологические особенности гнойного экссудата.

Материальное оснащение.

1. Обезжиренное предметное стекло - 2 шт.

2. Стекло со шлифованными гранями - 1 шт.

3. Ванночка для окраски мазков со

стеклянными рельсами - 1 шт.

4. Микроскоп - 1 шт.

5. Гнойный экссудат (цельный) - 2 мл.

6. Смесь Никифорова - 100 мл.

7. Краска Романовского-Гимза

(1 мл краски на 9 мл дистиллированной воды) - 10 мл.

8. Иммерсионное масло в масленке - 1 шт.

Способ определения.

На предметном стекле готовят тонкий мазок гнойного экссудата. После его высушивания фиксируют в смеси Никифорова в течение 5 мин и заливают свежеприготовленной краской Романовского-Гимза на 20 – 25 минут. Затем краску сливают, мазок ополаскивают водопроводной водой и высушивают. Окрашенный мазок гнойного экссудата рассматривают под иммерсионной системой микроскопа (окуляр – 15^х , объектив - 90 ^х ). В тетрадях зарисовывают клеточные элементы гноя (лейкоциты, гнойные тельца). В заключении обсуждают возможные механизмы образования выявленного клеточного состава гнойного экссудата.

З а н я т и е № 11

Тема. Ответ острой фазы. Лихорадка. Гипертермия.

Цель занятия. Изучить состояние терморегуляторных механизмов

при лихорадке и перегревании.

Теоретические вопросы.

1. Ответ острой фазы, понятие, причины, клинические проявления, медиаторы и механизм их действия.

2. Определение понятия «лихорадка». Лихорадочная реакция в фило- и онтогенезе. Лихорадка как компонент ответа острой фазы.

3. Этиология лихорадки. Пирогенные вещества; природа экзо- и эндогенных пирогенов.

4. Механизмы действия пирогенов на центр терморегуляции.

5. Стадии лихорадки.

6. Характер соотношений теплопродукции и теплоотдачи на разных стадиях лихорадки.

7. Типы лихорадочных реакций.

8. Участие нервной, эндокринной и иммунной систем в развитии лихорадки.

9. Функциональные особенности органов и систем лри лихорадке.

10. Биологическое значение лихорадочной реакции.

11. Отличие лихорадки от эндогенного перегревания и других видов гипертермий.

Работа № 1. Экспериментальное воспроизведение лихорадки.

Материальное оснащение.

1. Термометр медицинский - 1 шт.

2. Шприц на 1 мл. - 1 шт.

3. Пирогенал - 1 мл.

4. Вазелин - 50 мл.

5. Животные: морская свинка - 1 шт.

Методика проведения опыта.

У морской свинки измеряют температуру тела. Для этого кончик термометра слегка смачивают вазелином и погружают в прямую кишку. Одновременно подсчитывают число дыханий в 1 мин. После регистрации исходных показателей животному вводят внутримышечно (в заднюю 1/3 бедра) 50 МПД (МПД – максимальная пирогенная доза. 1 МПД соответствует 0,01 мл или 0,1 мкг пирогенала) пирогенала. Температуру тела, а также частоту дыхания измеряют через 15; 30; 45; 60 и 90 мин после введения препарата. В динамике лихорадочной реакции наблюдают за состоянием и поведением животного, обращают внимание на цвет кожных покровов.

По результатам исследования строят температурную и дыхательную кривые. В заключении обсуждают вероятные механизмы развития выявленной стадии лихорадки.

Работа № 2. Модель перегревания теплокровного животного.

Материальное оснащение.

1. Термометр медицинский - 1 шт.

2. Шприц на 1 мл. - 1 шт.

3. Термостат, установленный на 52⁰С

4. Раствор гексенала 1 % - 5 мл.

5. Вазелин - 50 мл.

6. Животные: белая крыса - 1 шт.

Методика проведения опыта.

Белой крысе вводят внутрибрюшинно 1 % раствор гексенала из расчета 30 мг на 1 кг массы животного. В исходном состоянии измеряют ректальную температуру и подсчитывают частоту дыхания в 1 мин. Затем крысу помещают в термостат при температуре 52⁰С. Через каждые 15 мин измеряют температуру тела, оценивают характер дыхания. При этом наблюдают за состоянием и двигательной активностью животного, выясняют цвет кожных покровов.

На основании полученных данных строят температурную и дыхательную кривые. В заключении отмечают особенности функционирования терморегуляторных механизмов при перегревании организма. После сопоставления результатов выполненных экспериментов делают общий вывод по теме занятия.

З а н я т и е № 12

Тема. Гипоксия.

Цель занятия. Изучить этиологию и патогенез основных типов гипоксий, компенсаторно-приспособительные реакции организма и последствия острой и хронической гипоксий.

Теоретические вопросы.

1. Характеристика понятия гипоксии.

2. Принципы классификации гипоксий.

3. Этиология и патогенез основных типов гипоксий: гипоксической, респираторной, циркуляторной, гемической, тканевой.

4. Показатели газового состава артериальной и венозной крови при отдельных типах гипоксий.

5. Экстренные и долговременные адаптивные реакции при гипоксии, их механизмы.

6. Нарушения обмена веществ, структуры, функции клеток при острой и хронической гипоксии.

Работа № 1. Экспериментальная модель высотной болезни.

Материальное оснащение.

1. Установка, состоящая из насоса Комовского,

толстостенного сосуда и вакуумметра - 1 шт.

2. Счетная камера с сеткой Горяева и шлифованное

покровное стекло к ней - 1 шт.

3. Гемометр Сали - 1 шт.

4. Пипетка от гемометра Сали на 0,02 мл - 1 шт.

5. Стеклянная палочка в стакане - 2 шт.

6. Пробирки лабораторные - 2 шт.

7. Стеклограф - 1 шт.

8. Ватные тампоны

9. Лезвие безопасной бритвы - 1 шт.

10. 0,1 N раствор соляной кислоты - 5 мл.

11. 1 % раствор натрия хлорида - 10 мл

12. Этиловый спирт (96⁰) - 10 мл.

13. Животные: белая крыса - 3 шт.

Методика проведения опыта.

Одну из крыс помещают в толстостенный стеклянный сосуд аппарата Комовского. Через 5 минут отмечают состояние животного: подвижность, цвет ушей и лапок, оценивают частоту и глубину дыхания. Затем осуществляют дозированное откачивание воздуха из толстостенного сосуда, следя за показаниями встроенного в аппарат манометра. Регистрируют «высоту» (исходя из показателей представленной ниже таблицы 1), при которой наблюдаются: а) стадия компенсации (гиперпноэ, двигательное возбуждение, взъерошивание шерсти); б) стадия декомпенсации (боковое положение животного, акроцианоз, судороги); в) смерть. Этот этап опыта является исходным для последующих двух.

Таблица 1

Поиск по сайту: