Chlamydophila pneumoniae

С. pneumoniae (биовар TWAR) обладает тропизмом к эпителию респираторных путей. Источник – больной человек, механизм передачи – аспирационный, путь передачи-воздушно-капельный. Возбудитель вызывает респираторный хламидиоз, характеризующийся развитием пневмонии, катара верхних дыхательных путей. Большая часть случаев протекает субклинически. Это распространенные инфекции (антитела к C.pneumoniae выявляют почти у половины взрослого населения), однако диагностируются до настоящего времени плохо. С этим возбудителем связывают развитие отдельных форм бронхиальной астмы и атеросклероза.

С учетом многообразия клинических проявлений и необходимостью дифференциации различных клинических форм хламидиозов (прежде всего генитальных, а также эстрагенитальных) особое значение приобретает лабораторная диагностика.

Микробиологическая диагностика. Основным материалом для исследования служит мокрота, кровь, соскобы из слизистых оболочек.

Микроскопический метод. Для исследования С. trachomatis берут соскобы эпителия слизистой уретры, цервикального канала, конъюнктивы век, пунктаты. Для взятия материала из уретры и цервикального канала используют цитологическую щетку или ложку Фолькманна, с помощью которой берут соскоб.

Мазки используют для выявления цитоплазматических включений хламидий при окраске по Романовскому-Гимзе.

Серологический метод. Методы выявления антител наиболее эффективны при генерализованных формах хламидиозов, сопровождающихся выработкой антител в высоких титрах (орнитоз), и мало эффективны при локальных (особенно хронических) формах (урогенитальные хламидиозы). Большинство методов выявляет антитела к группоспецифическому липополисахариду хламидий, что не позволяет определить вид хламидий. Среди используемых методов:

1. РСК – достаточно специфичный, но малочувствительный метод;

2. РНГА – более эффективный метод для диагностики текущего инфекционного заболевания;

3. ИФА – наиболее чувствительный метод серологической диагностики. Некоторые варианты тест-систем ИФА позволяют дифференцировать C.pneumoniae от хламидий других видов;

4. НРИФ – обладает наибольшей степенью видоспецифичности.

Методы выявления возбудителя, его ДНК и антигенов. Метод флюоресцирующих антител (прямая РИФ) с моноклональными антителами (МКА) к группоспецифическому липополисахариду хламидий – наиболее распространенный, чувствительный и специфичный метод, позволяет выявлять локализацию возбудителя (урогенитальные мазки), морфологию (характер гранул, преобладание РТ или ЭТ). Метод требует высокой квалификации микроскописта и качества мазка-отпечатка (достаточное количество клеток с учетом внутриклеточного расположения возбудителя).

ИФА для выявления антигена применяется относительно реже, требует большого количества материала (соскоб), связана с получением суспензии и опасностью инфицирования персонала.

ПЦР для выявления ДНК хламидий – наиболее чувствительный метод. Однако и при нём возможны ложноположительные (при недостаточной чистоте работы – при контаминации) и ложноотрицательные (наличие в пробах материала ингибиторов Tag-полимеразы) результаты.

Недостатком методов выявления антигенов хламидий является возможность получения положительных результатов даже через 1–1,5 месяца после излечения. Нужна полная замена эпителия слизистой, содержащего поверхностные антигены разрушенных хламидий, для получения отрицательных результатов. Особенно это относится к ИФА, ПЦР, к РИФ – в меньшей степени (этот метод позволяет оценить морфологию включений хламидий).

Биологический метод. Орнитоз относится к группе высококонтагиозных инфекций, и выделение возбудителя из инфекционного материала можно проводить только в специализированных лабораториях. Применяют внутримозговое заражение белых мышей с последующим приготовлением препаратов из органов и постановкой прямой РИФ.

Заражение куриных эмбрионов и культуры клеток. Выделение С. trachomatis осуществляют путем заражения куриных эмбрионов или перевиваемых культур клеток Мак-Коя, L-929, Нер-2. Для этого материал гомогенизируют, добавляют 1 мл изотонического раствора натрия хлорида, содержащего 500 мкг стрептомицина и 1000 ед. пенициллина. Суспензию выдерживают 2 ч при 4°С и вводят по 0,2 мл в желточный мешок куриных эмбрионов 7-дневного возраста, и по 0,2 мл в пробирки с культурами клеток на стеклянных пластинах. При наличии в исследуемом материале хламидий эмбрионы погибают на 5–8-е сутки после заражения. Из желточных мешков погибших эмбрионов готовят мазки - отпечатки, которые фиксируют и окрашивают по методу Романовского-Гимзе или люминесцирующим хламидийным иммуноглобулином. Этими же методами выявляют хламидии в инфицированных культурах клеток.

Аллергологический метод. Применяют внутрикожную аллергическую пробу для ранней и ретроспективной диагностики орнитоза. Используют стандартные специфический и контрольный орнитозный диагностикумы. Диагностикумы вводят строго внутрикожно в дозе 0,1 мл: специфический – на правом, контрольный – на левом предплечье (на внутренней поверхности). Учет реакции через 24 ч. Внутрикожная проба с орнитином становится положительной со 2–3-го дня заболевания.

Профилактика и лечение. Применяют антибактериальные препараты, проникающие в клетки, чаще доксициклин или сумамед (азитромицин). Эффективному лечению часто препятствует одновременное наличие у больных гонококков и трихомонад (в трихомонадах хламидии могут находиться внутриклеточно). Эффективность современных методов лечения урогенитальных хламидиозов не превышает в идеале 98 - 99%, т.е. часть пациентов эффективно освободить от хламидий не удается, даже после нескольких циклов лечения. У этих больных часто развиваются дисбактериозы, присоединяется кандидоз, снижается резистентность к различным инфекционным агентам. Профилактика урогенитального хламидиоза такая же, как при других венерических болезнях. Для предупреждения заболевания орнитозом проводится борьба с болезнью среди птиц, дезинфекция и использование спецодежды. Специфическая профилактика не разработана.

Поиск по сайту: