Требования к проведению работ в микробиологической лаборатории

Работу с ПБА групп III и IV выполняют специалисты с высшим и средним специальным образованием. К ней допускают сотрудников, прошедших инструктаж по соблюдению требований безопасности работы с ПБА; последующий инструктаж следует проводить не реже одного раза в год. Все сотрудники, работающие с ПБА, должны находиться на диспансерном учёте. Приборы, оборудование и средства измерения должны быть аттестованы, технически исправны и иметь технический паспорт. Их метрологический контроль и техническое освидетельствование следует проводить в установленные сроки.

Из правил работы в «грязной зоне» базовой лаборатории:

Использование спецодежды и средств индивидуальной защиты. Перед работой следует проверить качество посуды, пипеток, шприцев и другого оборудования. При пипетировании необходимо пользоваться только резиновыми грушами или автоматическими устройства­ми. Строго запрещено пипетировать материал ртом, переливать его через край сосуда (про­бирки, колбы), а также оставлять без надзора рабочее место во время выполнения любых работ с ПБА. В грязной зоне запрещается курить, пить воду, хранить верхнюю одежду, головные уборы, обувь, пищевые продукты. В помещения зоны нельзя приводить детей и домашних животных.

После окончания работы все объекты, содержащие ПБА, должны быть убраны в хранилища (холодильники, термостаты, шкафы) с обязательной дезинфекцией столов. Использованные пипетки полностью (вертикально) погружают в дезинфицирующий раствор, избегая образо­вания пузырьков в каналах. Остатки ПБА, использованную посуду и оборудование собирают в закрывающиеся ёмкости и передают в автоклавную. Категорически запрещено сливать отходы с ПБА в канализацию без предварительного обеззараживания. После окончания ра­боты с ПБА и заражёнными животными, а также после ухода из лаборатории следует тща­тельно вымыть руки.

2.виды материала,сроки взятия,хранение,транспортировка

Общими требованиями к взятию и транспортировке биологического материала являются:

· Соблюдение оптимальных сроков для взятия биологического материала на исследование.

· Взятие биологического материала должно осуществляться с учетом места максимальной локализации возбудителя и возможных путей его выделения в окружающую среду.

· Биологический материал для исследования должен быть взят в необходимом и достаточном объеме с обеспечением условий, исключающих его контаминацию резидентной микрофлорой. Недостаточное количество материала может определять ложноотрицательный результат исследования.

· Взятие биологического материала должно производиться строго до начала применения антибактериальных и химиотерапевтических препаратов или не ранее чем через 10-14 дней после их отмены.

· Отобранный биологический материал должен быть промаркирован. В сопроводительном документе-направлении необходимо указать: пол, фамилию, имя, отчество, возраст пациента, предполагаемый диагноз или показания к обследованию, дату взятия пробы, какое учреждение направляет материал. При необходимости указывается и дополнительная информация – физиологическое состояние пациента, курение, прием алкоголя и т.д.

· Контейнеры для транспортировки материала должны обеспечивать герметичность, стерильность, целостность образцов, а также – исключать при открытии образование аэрозоля.

· Материал доставляется в лабораторию с учетом правил транспортировки для различных видов исследований и лицами, получившими специальный инструктаж. При направлении материала на исследование, прежде всего, необходимо исключить вероятность контаминации собранного биологического материала.

Взятие материала предпочтительно проводить до начала антибактериальной терапии. На фоне антибактериальной терапии материал забирают перед очередным введением антимикробных препаратов, то есть в момент, когда их концентрация в организме минимальна.

При взятии пробы следует строго соблюдать правила асептики, во избежание ее случайной посторонней контаминации.

Для взятия проб следует использовать стерильные инструменты, а для их транспортировки стерильные пробирки или контейнеры. Использование нестерильных сухих, чистых пробирок допускается только для отбора и транспортировки крови на серологические исследования.

Количество материала должно быть достаточным для проведения исследования.

Транспортировка материала должна осуществляться в максимально короткие сроки: как правило, не более 1,5 — 2 часов.

Всегда следует стремиться использовать транспортные системы со средой (консерванты), что позволяет пролонгировать время транспортировки до 24 часов и более или осуществлять посев непосредственно у постели больного (кровь, ликвор и др.);

Материал для исследования на неспорообразующие анаэробы, доставляемый без использования транспортных систем со средой (консервантов) должен транспортироваться:

· в специальном герметично закрытом флаконе, заполненном инертным газом, в который проба вносится путем прокола крышки иглой шприца;

· в одноразовом шприце, из которого удален воздух, и кончик которого закрыт либо стерильной резиновой пробкой, либо иглой, с надетым на нее штатным защитным колпачком.

Все образцы должны иметь четкую маркировку, обеспечивающую их безошибочную идентификацию. К каждому образцу прикладывается направление. В направлении на исследование должны быть отображены следующие данные:

· дата и время назначения исследования;

· дата и время взятия биологического материала;

· Ф.И.О. пациента;

· отделение, номер амбулаторной карты/истории болезни, номер палаты;

· возраст, пол;

· диагноз;

· Ф.И.О. лечащего врача;

· перечень необходимых исследований;

· подпись специалиста, проводившего забор клинического материала.

Для транспортировки образцов следует использовать преимущественно пластиковую одноразовую тару, герметично закрытую пластмассовыми, резиновыми пробками или завинчивающимися крышками. Запрещается использовать стеклянную посуду со сколами, трещинами и т.п. При транспортировке сосудов, закрытых целлюлозными (ватными) пробками, следует исключить их увлажнение.

Транспортировка биоматериала осуществляется в специальных закрытых переносках (укладках), желательно - термостатированных, выдерживающих дезинфекцию.

Сопроводительная документация помещается в предназначенный для нее карман переноски (укладки), а в случае его отсутствия — кладется в переноску в отдельном полиэтиленовом пакете.

При хранении биологического материала в холодильнике каждый образец упаковывается в отдельный полиэтиленовый пакет. Для этой цели выделяется отдельный холодильник, хранение в котором пищевых продуктов и лекарственных препаратов не допустимо.

Материалом для лабораторного исследования может быть любой биологический субстрат.

· Выделения человеческого организма - мокрота, моча, кал, слюна, пот, отделяемое из половых органов.

· Жидкости, получаемые с помощью прокола или откачивания, - кровь, экссудаты и транссудаты, спинномозговая жидкость.

· Жидкости, получаемые с помощью инструментально-диагностической аппаратуры, - содержимое желудка и двенадцатиперстной кишки, жёлчь, бронхиальное содержимое.

· Ткани органов, получаемые методом биопсии - ткани печени, почек, селезёнки, костного мозга; содержимое кист, опухолей, желёз.

4.1. Все собранные пробы отправляют в микробиологическую

лабораторию немедленно после получения, за исключением случаев

использования емкостей с транспортировочными средами, разрешенными

к применению для этих целей в Российской Федерации в установленном

порядке.

Это необходимо для:

- сохранения жизнеспособности возбудителей и возможности

выделения микроорганизмов, требующих особых условий

культивирования (Haemophylus и др.);

- предотвращения избыточного роста быстрорастущих и активных

микроорганизмов;

- поддержания соотношения исходных концентраций изолятов при

наличии в пробе микробных ассоциаций;

- сокращения времени контакта пробы с некоторыми антисептиками,

используемыми местно, которые могут обладать антибактериальной

активностью;

- объективизации клинического диагноза инфекционно-

воспалительного заболевания и оценки результатов терапии.

4.2. Допускается использование альтернативных методов для

увеличения сроков доставки биоматериала в лабораторию.

Пробы хранят в холодильнике при температуре 2-8 град. С, за

исключением нижеперечисленных случаев.

4.2.1. Когда пробу хранят в специализированной

транспортировочной емкости (транспортировочная система),

разрешенной к применению в установленном порядке, представляющей

собой стерильную одноразовую пробирку с агаризованной или жидкой

транспортировочной средой и зондом-тампоном, вмонтированным в

пробку и стерильно упакованным вместе с пробиркой. В таких

емкостях пробы хранят при комнатной температуре (18-20 град. С).

Транспортировочные среды, специальные плотные с активированным

углем и без него, позволяют обеспечить сохранение жизнеспособности

микроорганизмов, требующих особых условий культивирования, в

течение 48-72 ч.

Для проб на анаэробы и для фекальной флоры используют

специальные емкости с транспортировочной средой, пробирки со

средами для выделения кампилобактерий и хеликобактера, разрешенные

к применению в установленном порядке. Такие среды создают

анабиотическую атмосферу для микроорганизмов, что способствует

снижению их метаболизма, сдерживанию роста, препятствует их

высыханию и накоплению продуктов жизнедеятельности.

Каждую пробу, собранную в жидкую среду, тщательно перемешивают

со средой.

4.2.2. Когда кровь культивируют в бульоне, тогда после

получения пробу хранят в термостате при температуре 35-37 град. С.

Если пробы собирают в специальные емкости для последующего

исследования с двухфазной средой, их следует хранить при комнатной

температуре (18-20 град. С).

4.2.3. Когда при возможном наличии температурозависимых

микроорганизмов (Neisseria sp.) пробы оставляют при комнатной

температуре (18-20 град. С).

4.2.4. Когда пробу хранят в емкостях с соответствующими

питательными средами, подготовленных в лаборатории или разрешенных

к применению в установленном порядке при проведении:

- бактериологических исследований - в пробирках с

вмонтированными зондами-тампонами или без них со средой, состоящей

из забуференного физиологического раствора с глицерином для

определения энтеробактерий семейства Кишечных ("на дизгруппу") и

аэромонад. При работе с тампонами, вмонтированными в ватно-

марлевую пробку, следят за тем, чтобы не замочить (не загрязнить)

пробку средой и/или собранным материалом. Собранную пробу

тщательно перемешивают со средой. Используют также готовые

пробирки со специальной плотной средой, разрешенные к применению в

установленном порядке;

- вирусологических исследований - в специальных емкостях с

жидкой средой, разрешенных к применению в установленном порядке;

- паразитологических исследований - пробу тщательно смешивают с

консервантом.

Пробы ликвора хранят при комнатной температуре (18-20 град. С),

а при проведении в лаборатории вирусологических исследований - в

термостате при 35-37 град. С.

4.3. Для транспортирования проб, исследуемых на наличие аэробов

и факультативных анаэробов, используют:

- одноразовые стерильные сухие пробирки с вмонтированным зондом-

тампоном (тубсеры) или емкости с транспортировочной средой,

разрешенные к применению для этих целей в Российской Федерации в

установленном порядке; допускается использование стерильных

стеклянных пробирок, укупоренных газопроницаемой пробкой с

вмонтированным зондом-тампоном, приготовленных в лаборатории;

- одноразовые стерильные емкости с завинчивающейся крышкой

(допускаются стеклянные с газопроницаемой пробкой) - для сбора

проб мочи, мокроты, фекалий, бронхоальвеолярного лаважа,

биопсийного (кусочки ткани) материала;

- стерильные одноразовые с завинчивающейся пробкой или

стеклянные пробирки - для сбора стерильных жидкостей, бронхо-

альвеолярного лаважа, отделяемого из дренажей или соскобов;

- стерильные чашки Петри - для сбора проб волос или для

транспортирования соскобов с маркировкой дна чашки;

- специальные стерильные носоглоточные и урогенитальные зонды-

тампоны с осью из алюминия (диаметр оси - 0,9 мм) и маленьким

тампоном из хлопка или вискозы на кончике (диаметр тампона - 2,5

мм), вмонтированным в пробку, укупоривающую стерильную одноразовую

стеклянную пробирку - для проб из носоглотки на В. pertusis и из

уретры у мужчин.

4.4. Для транспортирования проб, исследуемых на наличие

анаэробов, используют емкости со специальными транспортировочными

средами и пробирки с тиогликолевой средой; пробирки со средами для

выделения кампилобактерий и хеликобактера, разрешенные к

применению для этих целей в Российской Федерации в установленном

порядке. Пробу, собранную в жидкую среду, тщательно с ней

перемешивают. Для получения проб рекомендуются следующие приемы:

- отделяемое дренажей, используемых для активной аспирации

полостей, отсасывают стерильным шприцем с плотным поршнем в объеме

2-4 мл; на заполненный шприц надевают стерильную иглу, закрытую

стерильным ватным тампоном, удаляют из шприца избыток воздуха;

ватный тампон сбрасывают в дезинфицирующий раствор; конец иглы

вкалывают в стерильную резиновую пробку и в таком виде шприц с

материалом доставляют в лабораторию;

- содержимое очагов инфекции и полостей, получаемое путем их

пунктирования, собирают в объеме 2-4 мл с помощью 2-, 5-, 10-

миллилитровых шприцев с плотным поршнем; из шприца удаляют избыток

воздуха, закрыв иглу стерильным ватным тампоном, который затем

сбрасывают в дезинфицирующий раствор; иглу дезинфицируют

протиранием тампоном, смоченным 70%-м этиловым спиртом; для

герметизации конец иглы вкалывают в стерильную резиновую пробку и

в таком виде шприц с материалом доставляют в лабораторию.

При сборе большого объема материала (3 мл и более) анаэробные

бактерии могут оставаться жизнеспособными в течение 24 ч. при

комнатной температуре (18-20 град. С).

Если отделяемого всего несколько капель, его переносят из

шприца в небольшую емкость или в пробирку с транспортировочной

средой немедленно после получения (емкости с транспортировочными

средами накануне получают в лаборатории).

Кусочки тканей (биопсийный материал) при подозрении на

анаэробную инфекцию собирают в стерильные одноразовые емкости с

завинчивающейся крышкой (допускается - в стеклянную посуду с

притертой крышкой) и доставляют в лабораторию немедленно.

4.5. Для транспортирования проб, исследуемых на наличие

вирусов, используют специальные емкости с жидкой средой для

сохранения вирусов.

Получение у пациента любой пробы, требующей использования

инвазивных методов, рекомендуется производить врачом (исключение -

проба крови, которую может собирать процедурная медицинская

сестра).

На этом http://bibliofond.ru/view.aspx?id=458962 сайте есть целая лекция кому нужно где всё подробненько)

3.питательные среды

Выращивание (культивирование) микроорганизмов используется в лабораторных и производственных условиях для выделения, накопления и сохранения микроорганизмов.

Для культивирования микроорганизмов используют специальные питательные среды, которые должны содержать необходимые питательные вещества и являться оптимальной средой обитания микроорганизмов.

В состав питательной среды обязательно входят 5 основных элементов (С, Н2, О2, N) и зольные элементы, микроэлементы, количество воды не менее 60%.

Универсальных сред, пригодных в равной степени для всех микроорганизмов, не существует. В закономерности от особенностей обменных процессов (фотосинтез, способы получения энергии) отдельным видам микроорганизмам требуются различные составы питательных веществ.

По составу питательные среды подразделяются на 2 группы:

- естественные

- искусственные.

Естественными называются среды, которые состоят из натуральных пищевых продуктов (молоко, яйца, мясо). Большинство из них применяют в виде экстрактов или настоев. Эти среды имеют сложный, непостоянный химический состав и мало пригодны для изучения физиологии обмена веществ микроорганизмов. Они используются главным образом для поддержания культур микроорганизмов, накопления их биомассы и диагностических целей.

Примерами служат мясопептонный бульон, почвенная вытяжка, картофельная среда.

Искусственные среды (синтетические среды) - это среды, в состав которых входят только определенные, химически чистые соединения, взятые в точно указанных концентрациях. Синтетические среды удобны для использования обмена веществ микроорганизмов. Зная точный состав и количество входящих в среду компонентов, можно изучить их потребление и превращение.

Для разработки синтетических сред необходимо знать потребности микроорганизмов в источниках питания и основные особенности их обмена веществ.

В большинстве случаев синтетические среды готовят на водопроводной воде и микроэлементы не добавляют.

К ним можно отнести: гидролизат козеина, дрожжевой автолизат, кукурузный экстракт.

По назначению различают элективные и дифференциально-диагностические среды.

Элективные среды обеспечивают развитие одного вида или группы микроорганизмов и непригодны для развития других. Элективные среды применяют главным образом для выделения микроорганизмов из мест их естественного местообитания или для получения накопительных культур.

Дифференциально-диагностические (индикаторные) среды позволяют достаточно быстро отличить одни виды микроорганизмов от других. Состав этих сред подбирают с таким расчетом, чтобы позволить четко выявить наиболее характерные свойства определенного вида.

Индикаторные среды применяются в клинической бактериологии, при генетических исследованиях.

По физическому состоянию различают: жидкие, плотные, сыпучие среды.

Жидкие среды широко применяют для выяснения физиолого-биохимических особенностей микроорганизмов, для накопления биомассы.

Плотные среды используют для выделения чистых культур (получение изолированных колоний) для хранения культур, количественного учета микроорганизмов.

Сыпучие среды применяют в промышленной микробиологии. К ним относятся: отруби, кварцевый песок, разваренное пшено.

Для уплотнения сред применяют агар-агар, желатину и кремнекислый гель.

Агар-агар - сложный полисахарид, получаемый из морских водорослей. Агар-агар удобен тем, что большинство микроорганизмов не использует его в качестве питательного субстрата. в воде агар-агар образует гели которые плавятся при 1000С, а затвердевает при 400С. Поэтому на агаризованных средах можно культивировать микроорганизмы при любой подходящей для их роста температуре.

По составу делятся на ПРОСТЫЕ и СЛОЖНЫЕ
По консистенции – ЖИДКИЕ, ПОЛУЖИДКИЕ, ПЛОТНЫЕ
По назначению:
ОБЩЕГО НАЗНАЧЕНИЯ – МПА (мясо-пептонный агар), МПБ (мясо-пептонный бульон)
СПЕЦИАЛЬНЫЕ – или среды накопления, когда микроорганизмы не растут на простых питательных средах – желчный бульон.
ЭЛЕКТИВНЫЕ – оптимальные условия для определенного вида микроорганизмов
ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНО-ДИАГНОСТИЧЕСКИЕ – изучение ферментативных свойств – Эндо, Левина и Плоскирева; среды Гисса – изучение сахаролитических свойств, конечным продуктом распада углеводов являются углекислота и вода; изучение протеолитических свойств – конечным продуктом распада белков является – индол, сероводород, аммиак.
СРЕДА – КОНСЕРВАНТ – глицериновая смесь.
Демонстрация питательных сред:
МПА – в пробирке – скошенный агар
В чашке Петри
^ Среды Гисса – Глюкоза, лактоза, манит, сахароза
Эндо, Левина, Плоскирева
Висмут-сульфит агар

вопрос4.стерилизация.режимы

3.1. Стерилизации должны подвергаться все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, и отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждения.

Приказ Министерства здравоохранения Республики Беларусь от 25.11.2002 N 165 "О проведении дезинфекции и стерилизации учреждениями здравоохранения" (

Таблица 1. Виды стериализации.

Поясняем. При стерилизации горячим воздухом возбудители болезней уничтожаются высокой температурой 180°С в суховоздушном стерилизаторе. В случае подобной стерилизации в автоклаве эффект достигается уже при 120 °С. Инструменты в него укладывают так, чтобы они не касались друг друга. Для контроля стерилизации используют химические тесты, которые укладывают на каждую полку суховоздушного стерилизатора в виде конверта в 5 точках по четырем краям и в середине. Если хотя бы один химический тест не изменил цвет, стерилизацию всей партии инструментов проводят заново. Обратите внимание, что сроки хранения стерильного материала после этой процедуры незначительные – до 1 суток.

Об успешном проведении стерилизации можно говорить при соблюдении следующих параметров обработки: температурный режим, давление пара, время воздействия (экспозиция).

Таблица 2. Режимы стерилизации некоторых медицинских инструментов

Стерилизация горячим паром широко распространена в ежедневной медицинской практике. Ее достоинства – это короткий полный производственный цикл и невысокие температуры. Автоклавная техника а последние годы усовершенствовалась и позволяет при доступном для ЛПУ уровне затрат обеспечивать жесткие требования клинических стандартов.

Одним из основных условий проведения качественной стерилизации является загрузка автоклава в точном соответствии с рекомендациями производителя. Это означает правильное расположение и количество загружаемых предметов. Водяной пар должен свободно циркулировать, а конденсат своевременно выводиться. При загрузке автоклава обратите внимание на то, чтобы тяжелые инструменты располагались на нижних поддонах, а легкие - на верхних.

Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемым изделиям. Не допускается перекрывать продувочные окна и решетки вентиляции. Загрузку и выгрузку изделий проводят при температуре не выше 40-50°С.

Для контроля стерилизации в каждый бикс закладывают специальные термоиндикаторы. Они должны располагаться на трех разных уровнях - нижнем, среднем, верхнем - и позволяют осуществлять как внешний (в камере стерилизатора) и внутренний (в упаковке с изделиями) контроль. После окончания стерилизации и обязательно до использования стерильного материала проверяют тесты. Они должны изменить цвет. Если хотя бы одна полоска не изменила цвет, весь материал повторно стерилизуют.

Срок хранения простерилизованных изделий: в биксах без фильтра, в двойной мягкой упаковке – 3 суток; в пергаменте, бумаге мешочной непропитанной, мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром – 20 суток.

При положительной азопирамовой пробе в присутствии следов крови немедленно или не позднее чем через 1 мин появляется вначале фиолетовое, затем быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово-сиреневое или буроватое окрашивание реактива.

Азопирам, кроме гемоглобина, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств:

- пероксидаз растительного происхождения (растительных остатков);

- окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды и др.);

- ржавчины (окислов и солей железа);

- кислот.

При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и указанных окислителей наблюдается бурое окрашивание реактива, в остальных случаях происходит окрашивание в розово-сиреневый цвет.

При постановке азопирамовой пробы окрашивание реактива, наступившее позже чем через 1 мин после постановки пробы, не учитывается.

Результаты контроля отражают в журнале по форме N 366/у (табл. 9).

5.дезинфекция,методы

4.1. Дезинфекции должны подвергаться все изделия, не имеющие контакта с раневой поверхностью, кровью или инъекционными препаратами.

Изделия, используемые при проведении гнойных операций или оперативных манипуляций у инфекционного больного, подвергают дезинфекции перед предстерилизационной очисткой и стерилизацией.

Кроме того, дезинфекции подлежат изделия медицинского назначения после операций, инъекций и т.п. лицам, перенесшим гепатит В или гепатит с неуточненным диагнозом (вирусный гепатит), а также являющимся носителем НВ-антигена.

Таблица 9. Дезинфекция изделий медицинского назначения*

Примечания.

1. При разработке изделий медицинского назначения контроль устойчивости к дезинфицирующему агенту следует проводить по режиму, используемому при туберкулезе, а если препарат не рекомендуется при данной инфекции, то по режиму, используемому при вирусных гепатитах.

2. Дезинфекцию медицинского инструментария можно проводить медицинской перекисью водорода и технических марок А и Б с последующей мойкой инструментов.

3. Концентрация дезинфицирующего агента: хлорамин, дихлор - 1, сульфохлорантин, хлороцин, дезам, нейтральный гипохлорит кальция дана по препарату.

4. Для изделий и их частей, не соприкасающихся непосредственно с пациентом, протирание должно проводиться смоченной в дезинфицирующем растворе и отжатой салфеткой во избежание попадания дезинфицирующего раствора во внутрь изделия.

5. После дезинфекции способом погружения изделия должны быть промыты в проточной воде до полного удаления запаха дезинфицирующего средства.

6. Дезинфицирующий раствор должен применяться однократно.

7. При дезинфекции кипячением и паровым методом изделия из полимерных материалов должны быть упакованы в марлю.

Вопрос6.Контроль стерилизации,дезинфекции

7.1. Паровые, воздушные и газовые стерилизаторы, используемые для стерилизации изделий медицинского назначения, подлежат контролю. Контроль позволяет оперативно выявить несоответствие режимов стерилизации, вызванное техническими неисправностями аппаратов и нарушением технологии проведения стерилизации.

7.2. Контроль стерилизации предусматривает проверку параметров режимов стерилизации и оценку ее эффективности. Контроль режимов стерилизации проводят физическим (с помощью контрольно-измерительных приборов: термометров, мановакуумметров и др.), химическим (с использованием химических индикаторов) и бактериологическим (с использованием споровых форм тест-культур) методами.

Организация и порядок проведения контроля за стерилизацией изделий медицинского назначения осуществляется согласно методическим указаниям МУ N 90-9908 "Контроль качества стерилизации изделий медицинского назначения".

Самоконтроль работы стерилизаторов проводит персонал ЛПУ физическим и химическим методами - при каждой загрузке стерилизаторов, бактериологическим - ежемесячно. Специалисты санитарно-эпидемиологических учреждений проводят плановый контроль согласно действующим нормативным документам.

7.3. Проверку температурного режима осуществляют с помощью максимальных термометров, которые помещают в контрольные точки стерилизаторов в соответствии с таблицей 10 (паровые стерилизаторы) и таблицей 11 (воздушные стерилизаторы).

Для контроля температуры используют также химические индикаторы различных типов (наружные, внутренние, мультипараметрические, интеграторы), которые помещают в контрольные точки, указанные в таблицах 10 и 11.

Медицинский персонал, использующий средства физического и химического контроля, регистрирует результаты контроля в журнале по форме N 257/у.

Бактериологический контроль работы стерилизационной аппаратуры осуществляют с помощью биотестов, оценивающих гибель спор термоустойчивых микроорганизмов. Биотесты представляют собой дозированное количество спор тест-культуры на носителе (или в нем), помещенном в упаковку, которая предназначена для сохранения целостности носителя со спорами и предупреждения вторичного обсеменения после стерилизации. в качестве носителей можно использовать инсулиновые флаконы, чашечки из алюминиевой фольги (для паровых и воздушных стерилизаторов), а также диски из фильтровальной бумаги (для воздушных стерилизаторов). Упакованные биотесты помещают в те же контрольные точки стерилизационной камеры, что и средства физического и химического контроля.

7.4. Основанием для заключения об эффективной работе стерилизационной аппаратуры является отсутствие роста тест-культуры при бактериологических исследованиях всех биотестов в сочетании с удовлетворительными результатами физического и химического контроля.

Поиск по сайту: